BCA蛋白浓度测定试剂盒使用说明
试剂盒组成 | 包装(500微孔) | 保存 |
BCA试剂 | 100ml | 2-8℃ |
Cu试剂 | 3ml | 2-8℃ |
PBS稀释液 | 30ml | 2-8℃ |
BSA蛋白标准(5mg/ml BSA) | 1ml | -20℃ |
本试剂盒自订购之日起一年内有效。本试剂盒用于酶标板或者200ul比色皿时可做500孔。当使用2ml比色皿时可做50孔,如果是1ml比色皿时可做100孔。
产品简介
碱性条件下,蛋白将Cu2+还原为Cu+,Cu+与BCA试剂形成紫颜色的络合物,测定其在562nm处的吸收值,并与标准曲线对比,即可计算待测蛋白的浓度。常用浓度的去垢剂SDS,Triton X-100,Tween不影响检测结果,但受螯合剂(EDTA,EGTA)、还原剂(DTT,巯基乙醇)和脂类的影响。实验中,若发现样品稀释液或裂解液本身背景值较高,可试用Bradford蛋白浓度测定试剂盒。
使用说明
一,微孔酶标仪法
1.配制工作液:根据标准品和样品数量,按50体积BCA试剂加1体积Cu试剂(50:1)配制成BCA工作液,充分混匀(混合时可能会有浑浊,但混匀后就会消失)。BCA工作液室温24小时内稳定。
2.稀释标准品:取10微升BSA标准品用PBS稀释至100微升(样品一般可用PBS稀释),使终浓度为0.5mg/ml。将标准品按0, 2, 4,6,8, 12, 16, 20微升加到96孔板的蛋白标准品孔中,加PBS补足到20微升。
3.将样品作适当稀释(多做几个梯度,如作2倍、4倍、8倍稀释),加20微升到96孔板的样品孔中。由于移液器在取小量时的误差,标准线前面的点可能不很准确,所以尽可能的让样品点落在标准线1/2后。
4.各孔加入200微升BCA工作液,37℃放置15-30分钟。用酶标仪测定A562nm,根据标准曲线计算出蛋白浓度。使用温箱孵育时,应注意防止因水分蒸发影响检测结果。
二,分光光度计法
如没有酶标仪,可用分光光度计在离心管中混匀后加入比色皿中比色。
步骤如下:
1.配制工作液:根据标准品和样品数量,按50体积BCA试剂加1体积Cu试剂(50:1)配制成BCA工作液,充分混匀(混合时可能会有浑浊,但混匀后就会消失)。BCA工作液室温24小时内稳定。
2,稀释标准品:取100微升BSA标准品用PBS稀释至1ml(样品一般可用PBS稀释),使终浓度为0.5mg/ml。
3,取八支(或者更多)5ml离心管,标让号,按下表加入试剂。
离心管号 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7(样品管1) | 8(样品管2) | 9(样品管3) |
标准蛋白BSA | 0 | 40ul | 80ul | 120ul | 160ul | 200ul | 200ul适当稀释的样品1 | 样品2 | …… |
PBS | 200ul | 160ul | 120ul | 80ul | 40ul | 0 | 0 | 0 | 0 |
BCA工作液 | 2ml | 2ml | 2ml | 2ml | 2ml | 2ml | 2ml | 2ml | |
4,37℃放置15-30分钟。用分光光度计测562nm处吸光值,根据标准曲线计算出蛋白浓度。
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