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快捷型植物基因组 DNA 提取试剂盒

适用范围:植物 DNA 提取试剂盒组分：Buffer FA 80mlBuffer FB 28mlBuffer GE 20mlRnase A(10 mg/ml) 1.2ml

保存条件：Buffer GE 4°CRnase A 4°C其它组分室温保存

本试剂盒采用特*的缓冲液系统，特别适合从植物干粉或者新鲜植物材料中提取 基因组 DNA。无需酚/氯仿抽提，使用安全方便，可***限度去除杂质蛋白及细胞中 其他有机化合物。对样品的起始重量没有限制，实验者可根据自己的需求灵活调整。

提取的基因组 DNA片段大，纯度高，质量稳定可靠。 使用本试剂盒回收的 DNA 可适用于各种常规操作，包括酶切、PCR、文库构建、 Southern杂交等实验。

产品特点简单快速：1h 内即可获得超纯的基因组 DNA。广泛：适用于各种植物组织。超纯：获得的 DNA 纯度高，可直接用于 PCR、酶切、杂交等分子生物学实验。

注意事项1．样品应避免反复冻融，否则会导致提取的 DNA 片段较小且提取量也下降。2．Buffer FA 可能会发黄，并不影响提取效果。3．若缓冲液 FA 或 FB 有沉淀析出，可在 37℃水浴溶解，摇匀后使用。4．所有离心步骤均为使用台式离心机，室温下离心。操作步骤1．取植物新鲜组织 100 mg 或干重组织 20 mg，加入液氮充分碾磨。加入 400ul Buffer FA 和 6ul 的 Rnase A(10 mg/ml)，旋涡振荡 1min，室温放置 10min。注意：由于植物材料多样性非常丰富，所取实验材料的最适量需根据材料的不同，或相同材料的不同组织等进行摸索。。2．加入 130ul Buffer FB，充分混匀，涡旋振荡 1min。3．14,000×g 离心 3min，将上清转移至新的离心管中。4．将上清液再次 14,000×g 离心 5min，将上清转移至新的离心管中。注意：此步骤目的为去除上清液中的沉淀杂质，使提取基因组 DNA 纯度更高。5．向上清液中加入 0.7 倍体积的异丙醇，充分混匀，此时会出现絮状基因组 DNA。（例如 500ul 的上清液加 350ul 异丙醇），13,000×g 离心 2 min，弃上清，保留沉淀。6．加入 600ul 70%乙醇，涡旋振荡 5sec，13,000×g 离心 2 min，弃上清。7．重复步骤 6。8．开盖倒置，室温 5-10 min，晾干残余的乙醇。注意：乙醇的残留会影响后续的酶反应（酶切、PCR 等）实验。9．加入适量 Buffer GE，65℃水浴 10-60 min 溶解 DNA，其间颠倒混匀数次助溶。最终得到 DNA 溶液。DNA 浓度及纯度检测得到的基因组DNA片段的大小与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。回收得到的 DNA 片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。DNA 应在 OD260 处有显著吸收峰，OD260 值为 1相当于大约 50ug/ml双链 DNA、40 ug/ml 单链 DNA。OD260/OD280 比值应为 1.7-1.9，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用 ddH2O，比值会偏低，因为 pH 值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。

本产品仅供科研使用，请勿用于临床诊断及其他用途

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