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海藻糖-6-磷酸合成酶(TPS)测试盒

分光光度法 50管/48 样

正式测定前务必取2-3 个预期差异较大的样本做预测定

测定意义：

海藻糖是由两个葡萄糖分子以α, α-1-1 糖苷键连接而成的一种非还原双糖， 广泛存 在于细菌、酵母菌、霉菌、食用菌、低等植物、昆虫、无脊椎动物和高等植物等多种有机体 中。海藻糖的非还原性决定了它对酸、碱、高温等的稳定性。另外，它本身具有很强的吸水 性，使它在生物体内具有抗脱水作用，在逆境条件下可通过识别外界刺激、产生和传递信号、基因表达和代谢调节来保护植物免受不良环境的伤害。

植物体内主要以葡萄糖为底物合成海藻糖，该反应首先在海藻糖-6-磷酸合成酶

（trehalose-6-phosphate synthase，TPS）的作用下，催化尿苷二磷酸葡萄糖（UDPG）和6-磷酸葡萄糖反应生成中间产物6-磷酸海藻糖，再在海藻糖-6-磷酸磷酸酶 （trehalose

6-phosphate phosphatase，TPP）的作用下去磷酸化，生成海藻糖。因此，测定TPS活性对于

研究植物逆境具有重要意义。

测定原理：

TPS催化UDPG与G6P生成海藻糖-6-磷酸，同时产生UDP；UDP在丙酮酸激酶与乳酸脱氢酶作用下，氧化NADH为NAD+，NADH的下降速率与UDP 含量成正比，通过340nm吸光度下降速率反映TPS 活性。

需自备的仪器和用品：

分光光度计、水浴锅、可调式移液器、1mL 石英比色皿、研钵、冰和蒸馏水。

试剂的组成和配制：

提取液：液体100mL×1 瓶，4℃保存；

试剂一：粉剂×1 瓶，-20℃保存；临用前加入10mL试剂五溶解，用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融；

试剂二：粉剂×2 瓶，-20℃保存；临用前每瓶加入25mL试剂五溶解；现配现用；

试剂三：粉剂×1 瓶，-20℃避光保存；临用前加入0.1mL试剂五溶解，用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融；

试剂四：100μL×1 瓶，4℃避光保存；临用前低速离心，以防止试剂沾在管壁；

试剂五：液体100mL×1 瓶，4℃保存；

工作液的配制：临用前，先配置好1 瓶试剂二和试剂三，然后在试剂二瓶中加入25μL 试剂三和25μL 试剂四，充分混匀，现配现用。

样品测定的准备：

1、细菌或细胞的处理：收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照细菌或细胞数量（104个）：提取液体积（mL）为 500~1000：1的比例（建议500万细菌或细胞加入 1mL提取液），超声波破碎细菌或细胞（冰浴，功率20％或 200W，超声 3S，间隔 10S，重复30次）；8000g，4℃离心10min，取上清，置冰上待测。

2、组织的处理： 按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入 1mL 提取液），冰浴中匀浆。8000g

4℃离心10min，取上清，置冰上待测。测定步骤

1 、在 EP 管中加入如下试剂

混匀， 30℃反应 20min ，95℃水浴 2min 灭活， 冷却至室温。10000g 4℃离心 5min，取上层 反应液待测。2、工作液配制： 详见试剂的组成和配制中工作液的配制。3、在 1mL 玻璃比色皿中加入如下试剂

混匀，测定 340nm 下 5min 后吸光值 A1 与 10min 后吸光值 A2 ，ΔA=A1-A2。TPS 活力计算：1、按照蛋白浓度计算单位的定义：每 mg 组织蛋白每分钟催化 1nmol NADH 定义为一个酶活力单位。TPS 活力(nmol/min/mg prot)=ΔA×V 反总÷ ( ε×d）×109÷（V 样×Cpr）÷T×3=643×ΔA ÷Cpr2、按样本鲜重计算单位的定义：每 g 组织每分钟催化 1nmol NADH 定义为一个酶活力单位。TPS 活力(nmol/min/g 鲜重)=ΔA×V 反总÷ ( ε×d）×109÷（W× V 样÷V 样总） ÷T×3=643×ΔA÷W3、按细菌或细胞密度计算单位的定义：每 1 万个细菌或细胞每分钟催化 1nmol NADH 定义为一个酶活力单位。TPS 活力(nmol/min/104 cell)=ΔA×V 反总÷ ( ε×d）×109÷（V 样×细胞数量）÷T×3= 1.28×ΔAV 反总：反应体系总体积，1mL；ε：NADH 摩尔消光系数， 6.22×103 L / mol /cm；d：比色 皿光径， 1cm；V 样：加入样本体积， 0.15 mL；V 样总：加入提取液体积， 1 mL；T：反应 时间， 5 min；3，稀释倍数；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本质量；细胞数量， 500 万。

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